LAB-2 SUBLIMACIÓN Y EXTRACCIÓN DE CAFEÍNA

UNIVERSIDAD DE PANAMÁ

FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

QUÍMICA ORGÁNICA (QM 110)

LABORATORIO- 2

SUBLIMACIÓN Y EXTRACCIÓN DE CAFEÍNA

Prof. Colombia L. Wong

Prof. Liliana L. Escalante

1.    Introducción

La sublimación es un proceso en el cual sustancias en estado sólido pasan a estado gaseoso sin pasar por estado líquido.  Esta propiedad física es utilizada para la separación y purificación de sustancias orgánicas.  La cafeína es un alcaloide que puede separarse por este proceso y se determina cualitativamente por la reacción de murexina.

2.    Objetivos

v  Separar la cafeína por sublimación.

v  Separar la cafeína por extracción líquido-líquido.

v  Identificar la cafeína mediante pruebas cualitativas.

3.    Antecedentes

Algunos componentes orgánicos sólidos son capaces de pasar directamente al estado de vapor, muestran la propiedad característica de condensarse y adquirir el estado sólido nuevamente, sin transformarse en el líquido.  Tal proceso se conoce como sublimación y es un medio conveniente de separación y purificación.  La sublimación del yodo y del alcanfor son ejemplos familiares.  Entre los compuestos orgánicos que generalmente se purifican por este procedimiento, están: ácido benzoico, naftaleno, ácido salicílico y las quinonas (CONSTENLA y MATA, 1978).

La cafeína es una purina que por su comportamiento parecido al de las bases se considera dentro de las sustancias llamadas alcaloides.  La cafeína fue aislada originalmente en la semilla del café, de allí su nombre, donde se encuentra en concentraciones hasta de 1.5%; sin embargo, el té negro contiene hasta 5% de cafeína, por lo que es más apropiado obtenerla del té.  Usualmente los alcaloides se obtienen por extracciones y precipitaciones sucesivas, pero la cafeína se puede separar por sublimación, aprovechando sus propiedades físicas.  Industrialmente la cafeína se recoge en las chimeneas de los tostadores de café (DOMÍNGUEZ, 1980).

La cafeína es oxidada por ácido nítrico, formando un compuesto amarillo, cuya sal de amonio tiene un color rojo violáceo (reacción de la murexina). La disolución en benceno caliente de cafeína y ácido salicílico (mol a mol) forma al añadirle éter de petróleo un precipitado de salicilato de cafeína (DOMÍNGUEZ, 1980).

4.    Técnica operatoria

4.1   Separación de la cafeína

• Coloque 1 ó 2 gramos de té negro (té Lipton) en una cápsula de porcelana y lo tapa con un vidrio reloj de manera que quede a un centímetro de distancia de la superficie del té.
• Caliente hasta que los cristales se depositen en el vidrio reloj.
• Recoja los cristales de cafeína y obsérvelos con una lupa.

4.2  Reacción de la Murexina

• En una cápsula o crisol pequeño, ponga 0.05g de cafeína agregue 1 ó 2 mL de HNO₃ concentrado.
• Evaporar la mezcla, calentándola en la cámara de extracción de gases en baño María.
• Agregue al residuo una gota de NH₄OH, el cual debe tornarse inmediatamente de color rojo púrpura.

4.3   Extracción líquido-líquido de Cafeína del Té por

4.3.1 Aislamiento de la cafeína

• Pese en un vaso químico 15 g de té o café, adicione 15 g de CaCO₃.

·         Agregue a la mezcla 150 mL de agua, caliente de 15 a 20 min., agite de vez en cuando para evitar la formación de espuma.

• Filtre la mezcla al vacío, lave con 10 mL de agua y adicione al embudo y macere el residuo, deje enfriar el filtrado a temperatura ambiente.
• Coloque el filtrado en el embudo de separación

4.3.2  Extracción de la cafeína con cloroformo

·         Al filtrado en el embudo adicione 20 mL de cloroformo y agite suavemente para evitar emulsión.  Separe las capas.

·         Adicione 20 mL más de cloroformo, agite y separe las capas.  Repita el paso anterior.

·         Una vez obtenido el extracto clorofómico adicione 2 g de Na₂SO₄ anhidro, tape y agite ocasionalmente de 5 a 10 min., luego filtre en embudo de espiga larga.

·         Lave con 5 mL de cloroformo. Entregue el extracto que será utilizado para cromatografía.

5.   Investigación

• De la fórmula estructural y resumida de la cafeína.
• Qué es un alcaloide y cuál es el efecto de la cafeína en la salud (positivo y negativo).
• Explique otra técnica para extraer la cafeína.

6.   Bibliografía

DOMÍNGUEZ, X. 1980.  Experimentos de Química orgánica.  Limusa.  México. 203p.

CONSTENLA, U.; MATA, J.  1978.  Química orgánica experimental.  Litografía e Imprenta LIL, S.A.  416p.

MORRISON, R.; BOYD, R.  1990.  Química Orgánica.  Fondo Educativo Interamericano, S.A.  E.U.A.  1291p.

LAB-3 MÉTODO DE SEPARACIÓN DE COMPUESTOS ORGÁNICOS. EXTRACCIÓN II

UNIVERSIDAD DE PANAMÁ

FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

QUÍMICA ORGÁNICA (QM 110)

LABORATORIO Nº 3

MÉTODOS DE SEPARACIÓN DE COMPUESTOS ORGÁNICOS. EXTRACCIÓN II

Prof. Colombia L. Wong C.

Prof. Liliana L. Escalante  

1.    Introducción

La extracción es una técnica para separar compuestos basándose en las solubilidades.  Las hojas de los vegetales contienen varios pigmentos en particular; dos clorofilas, xantofila y beta-caroteno.  Como estos son de estructura diferente, difieren en sus características de solubilidad, por lo que para extraerlos simultáneamente se puede usar una mezcla de disolventes, y posteriormente separarlos entre sí mediante disolventes selectivos.

La zanahoria (Daucus carota) es muy rica en B-caroteno y trazas de xantofila, de donde se pueden extraer previa destrucción de las células que los contienen a través de la técnica de extracción.

2.    Objetivos

v  Separar los pigmentos en la espinaca y zanahoria a través de la técnica de extracción.

v  Identificar los pigmentos mediante pruebas cualitativas.

v  Manipular correctamente el embudo de separación.

v  Conocer las medidas de bioseguridad.

3.    Conceptos previos

Técnica de extracción, purificación, solubilidad, inmiscibilidad.

4.    Antecedentes

Domínguez (1980) señala que la extracción es una operación que tiene por objeto separar una substancia del material sólido o líquido que la contiene, con objeto de purificarla mediante el uso de un disolvente inmiscible con el material.  Los disolventes más comunes son: agua, éter etílico, éter de petróleo, etanol, benceno.  Por extracción se aíslan y purifican numerosos productos naturales, como: vitaminas, alcaloides, grasas, hormonas, colorantes, etc.

También nos dice que la extracción puede ser: discontinua (agitar una disolución acuosa con éter etílico en un embudo de separación) o continua (extractor tipo Soxleht). En el caso de una extracción líquido-líquido, el compuesto se encuentra disuelto en un disolvente A y para extraerlo se emplea un disolvente B, los que deben ser inmiscibles.  A y B son agitados, y entonces el compuesto se distribuye entre ambas capas de acuerdo con sus respectivas solubilidades. Constela y Mata (1978) expresan que a la relación que guardan, a una temperatura dada, las concentraciones del soluto en cada disolvente, se le denomina Coeficiente de distribución o de participación.

Los extractos obtenidos a partir de disoluciones acuosas, son desecados antes de eliminar el disolvente, empleándose diversas substancias higroscópicas tales como: sulfato de sodio anhidro, sulfato de magnesio anhidro y cloruro de calcio anhidro entre otros.

5.    Técnica operatoria

5.1   Extracción de pigmentos en la espinaca

a.    Macere 3 ó 4 hojas de espinaca.

b.    Introdúzcalas por media hora en una mezcla de solventes (45mL de éter de petróleo, 5mL de benceno y 15mL de metanol).

c.    Filtre rápidamente en un embudo Buchner (4.5cm de diámetro) y lave el residuo con mezcla extractora.

d.    Pase el filtrado a un embudo de separación y se lava con agua, evitando agitarlo demasiado.  Se deja reposar y se separa la capa acuosa inferior.

e.    A 10mL de la disolución en éter de petróleo se le añaden 5mL de una disolución al 10% de hidróxido de potasio en metanol.  Se observa que en la interfase se forma una capa obscura, debido a la saponificación de las clorofilas alfa y beta.  Se le agregan 10mL de agua, se agita la mezcla y se anotan los colores de la capa metanol-agua.

f.     La capa de éter de petróleo, se separa y se lava con 10mL y luego con 10mL de solución saturada de cloruro de sodio.

g.    La xantofila se extrae añadiendo a la capa de éter de petróleo un volumen igual de metanol al 92% (10mL).  La capa metabólica se separa y se repite una vez más la extracción con metanol al 92%.  En la capa etérea se quedan los carotenos.  Se observan los colores de cada uno de los extractos.

h.    Pruebas para xantofila: agregue a 4mL de disolución metabólica, 2mL de HCl concentrado y observe los cambios de color (verde brillante, luego lentamente azul pavo real, después púrpura y finalmente, incoloro).

i.      Prueba para carotenos: Agregue 2mL del extracto en éter de petróleo a una mezcla de 0.1g de nitrito de sodio y 3mL de solución de ácido sulfúrico (1:4).

       5.2     Extracción de pigmentos en la zanahoria

a.    Corte una zanahoria en trozos pequeños.  Hiérvalos en agua durante una hora.  Cuélelos a través de un paño, exprímalos para separar toda el agua posible.  Puede usar puré de zanahorias tipo Gerber o Heinz.

b.    Pulverícelo y colóquelo en un erlenmeyer conteniendo 45ml de éter de petróleo y deje reposar por 30 minutos.

c.    Filtre y extraiga la disolución con dos porciones iguales de metanol al 92% (9.2mL de metanol y 0.8mL de agua).

d.    Realice la prueba para xantofila con la capa metanólica.

e.    Realice la prueba para B-carotenos con la capa de éter de petróleo.

6.    Investigación

1.    Describa el principio en que se basa la extracción líquido-líquido.

2.    Qué diferencia existe entre éter de petróleo y éter etílico.

3.    Qué otra técnica se puede utilizar para extraer los pigmentos.

7.    Bibliografía

DOMÍNGUEZ, X. 1980.  Experimentos de Química orgánica.  Limusa.  México. 203p.

CONSTENLA, U.; MATA, J.  1978.  Química orgánica experimental.  Litografía e Imprenta LIL, S.A.  416p.

MORRISON, R.; BOYD, R.  1990.  Química Orgánica.  Fondo Educativo Interamericano, S.A.  E.U.A.  1291p.

LAB-4 CROMATOGRAFÍA DE CAPA DELGADA

UNIVERSIDAD DE PANAMÁ

FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

QUÍMICA ORGÁNICA (QM 110)

LABORATORIO Nº 4

CROMATOGRAFÍA DE CAPA DELGADA

Prof. Colombia L. Wong 

Prof. Liliana L. Escalante

1.    INTRODUCCIÓN:

Los métodos cromatográficos permiten fraccionar los componentes de una mezcla, ya que dependen de una migración selectiva y diferencial de los solutos a través de un sistema de dos fases. En este laboratorio utilizaremos la cromatografía de capa fina (TLC) para separar los pigmentos en la espinaca.

2.    OBJETIVOS:

·         Relacionar al estudiante con la técnica de cromatografía de papel como una manera sencilla de separar los componentes de un extracto.

·         Identificar las fases que componen la cromatografía.

3.    MARCO TEÓRICO:

La cromatografía es muy empleada para obtener y purificar algunas sustancias tales como: antibióticos, medicinas y productos industriales. Se puede dividir en cromatografía en columna, en papel, en capa delgada y en fase gaseosa. La cromatografía en papel y la de capa delgada son empleadas con fines analíticos en la determinación de materiales que se encuentran en pequeñas cantidades. La cromatografía en papel, lo mismo que la de capa delgada, son muy simples con técnica fácil de dominar y que permite identificar componentes que se encuentran en milésimas de miligramos. Además permiten determinar e identificar componentes en productos comerciales, líquidos, biológicos minerales y tejidos. (Domínguez, 1980).

La cromatografía de capa fina se conoce normalmente por sus siglas en inglés (TLC, thin layer chromatography). Es una técnica muy utilizada para la identificación y determinación de pureza de compuestos. También puede utilizarse como técnica de separación (cromatografía de capa fina TLC preparativa) a muy pequeña escala.

En esta técnica la fase estacionaria es una capa fina de gel de sílice u otro soporte con propiedades adsorbentes (en nuestro caso de 25 mm de espesor) dispuesta sobre un soporte de vidrio o aluminio que denominaremos placa. El eluyente o fase móvil será la mezcla de disolventes adecuada.

a. Aplicación de la muestra

La introducción de la muestra se realiza utilizando un tubo capilar. Para ello se ha de disolver una pequeña cantidad de la muestra a analizar en un disolvente volátil. A continuación, el extremo del tubo capilar se introduce en la disolución. La disolución ascenderá por el tubo por capilaridad. En uno de los lados de la placa, aproximadamente a 3 mm del borde, se ha de trazar a lápiz una línea recta, línea base, y sobre ella unos puntos de referencia. Sobre dichos puntos se pincha con el tubo capilar, de modo que una pequeña cantidad de la disolución pase a la placa. De esta manera, la muestra queda adsorbida por el soporte sólido en la placa.

b. Realización del cromatograma: Correr una placa.

El cromatograma se realiza en una cubeta que contiene el eluyente elegido. El nivel del eluyente debe de ser menor que la separación entre el borde de la placa y la línea base - el lugar donde se ha efectuado el pinchazo. La placa se introduce en la cubeta y se tapa. El eluyente asciende por la placa por capilaridad, arrastrando a su paso a los componentes de la mezcla. Naturalmente los componentes de la mezcla son arrastrados con diferente velocidad, de acuerdo con su distinta polaridad. Cuando el frente del eluyente llega casi al borde superior de la placa, esta se extrae de la cubeta. Se debe de trazar una nueva línea a lápiz indicando el nivel hasta el que ha ascendido el eluyente.

Polaridad de los compuestos orgánicos en orden creciente:

hidrocarburos < olefinas < flúor < cloro < nitro < aldehído

aldehído < éster < alcohol < cetonas < aminas < ácidos < amidas

c. Revelado del cromatograma

Una vez que el eluyente sobre la placa se ha secado se ha de proceder a la visualización del cromatograma. En determinados casos, si los compuestos son coloreados esto puede realizarse de forma directa. Sin embargo, para compuestos incoloros es necesario utilizar diferentes técnicas de revelado.

Las placas de cromatografía comerciales portan un agente fluorescente inorgánico en la fase estacionaria. Ello permite visualizar el cromatograma iluminando la placa con una lámpara de luz ultravioleta UV. Los diferentes compuestos aparecen en la placa como manchas circulares. Las distintas manchas deben de marcarse a lápiz sobre la placa para su estudio posterior.

Diferentes reactivos orgánicos también permiten el revelado permanente de la placa, obteniéndose manchas coloreadas en ella. De entre los métodos más comunes puede destacarse la utilización del Iodo. Para ello la placa se introduce en una cubeta que contiene cristales con Iodo y se deja estar en ella durante unos minutos. Los vapores de iodo se disuelven en las manchas de los compuestos orgánicos tiñéndolas de color marrón (Manual de pruebas).

Domínguez (1980) afirma que cuando los materiales que se tratan de identificar son incoloros, se efectúa la cromatografía y una vez que el disolvente (fase móvil) ha alcanzado una determinada altura, se detiene la operación, se seca el papel o la capa delgada y finalmente se cubre son na dispersión muy fina de un reactivo que dé reacciones coloridas con el material a identificar, los que aparecen como unas manchas.

4.     TÉCNICA OPERATORIA: 

·         Utilizando una placa para cromatografía, trace una línea horizontal del origen a más o menos 1.5 o 2 cm.

·         Coloque círculos sobre la línea, que le permita diferenciar las muestras, aplique sobre estos con el uso de un capilar una o dos manchas de la muestra, deje evaporar el solvente y aplique nuevamente.

·         Una vez implantadas las muestra coloque la placa en una cámara que contenga una mezcla de solventes butanol:ácido acético:agua (6:4:2) de aproximadamente 1cm de altura (no debe tocar el punto donde empieza la mancha).

·         Cubra la cámara y deje ascender el frente de disolvente unos 8 a 9 cm, luego de este tiempo saque la placa y con un alfiler marque la altura máxima alcanzada. Una vez seca la placa observe las manchas coloridas, marque su posición y mida las distancias recorridas por las manchas y divida entre las distancias recorridas por el frente de disolvente y determine el Rf.

5.   INVESTIGACIÓN 

·         ¿Qué fases comprende la cromatografía? Explique.

·         ¿A qué se le llama eluyente?

·         ¿Qué características debe tener el eluyente?

·         ¿Qué mezcla de solventes se utilizaron y cómo lo prepararon?

·         ¿Aparte de la cromatografía de capa delgada defina otros tipos?

6.   BIBLIOGRAFÍA

DOMÍNGUEZ, X.1980. Experimentos de Química Orgánica. Limusa. México. 203p.

Manual de pruebas. Área de Bioactividad. Universidad Particular de Loja.  Ecuador.

LAB-5 IDENTIFICACIÓN DE CARBONO, HIDRÓGENO Y OXÍGENO

UNIVERSIDAD DE PANAMÁ

FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

QUÍMICA ORGÁNICA (QM 110)

LABORATORIO Nº 5

IDENTIFICACIÓN DE CARBONO, HIDRÓGENO Y OXÍGENO.

Prof. Colombia L. Wong

Prof. Liliana L. Escalante

1.    INTRODUCCIÓN:

.Los compuestos orgánicos están compuestos en un alto porcentaje de carbono, hidrógeno y oxígeno.  A través del análisis elemental se pueden determinar cualitativamente la presencia de estos elementos en un compuesto orgánico.  Existen evidencias en una reacción química como lo son: un residuo negro después de quemar una sustancia; o bien,  la formación de un precipitado como evidencia de carbono.

En esta experiencia se determinará cualitativamente la presencia de carbono, hidrógeno y oxígeno utilizando el método de óxido cúprico.

2.    OBJETIVOS:

·         Identificar cualitativamente la formación de compuestos orgánicos.

·         Conocer las propiedades del C, H y O.

3.    MARCO TEÓRICO:

Los compuestos orgánicos, se caracterizan por su procedencia de la naturaleza viva y aparte de ser los responsables de formar los tejidos de los seres vivos, representanmateria prima para la creación de sustancias que mejoran la calidad de vida del ser humano, por ende es necesario conocer sus composición y estructura química.

El análisis elemental es el conjunto de operaciones que permiten conocer cuales son los elementos y en que proporción se encuentran en un compuesto químico. Se desarrollara en dos etapas.

• Análisis Elemental Cualitativo;  si se propone determinar cuales son los elementos que constituyen la sustancia orgánica o la sustancia de estudio.

• Análisis Organoléptico; consiste en determinar las características del compuesto que aprecian nuestros sentidos: vista y olfato fundamentalmente  el análisis organoléptico tiene en cuenta el olor y el aspecto del compuesto. Mediante éste es posible identificar algunas de las características más importantes.

Los elementos que se encuentran  comúnmente en los compuestos orgánicos son Carbono, Hidrógeno, Oxígeno y Nitrógeno. Si al calentar cierta cantidad de una muestra  desconocida arde con una llama luminosa; dejando o no un pequeño  residuo, es casi seguro que es un compuesto orgánico, que contiene Carbono con excepciones estables, por ejemplo: el Tetracloruro de Carbono  (CCl₄) los compuestos orgánicos son combustibles, en tanto las inorgánicas no lo son, de hecho esta propiedad puede emplearse como un sencillo estado experimental para determinar si un compuesto es orgánico o inorgánico.

3.1 Carbono

El carbono elemental existe en dos formas alotrópicas cristalinas bien definidas: diamante y grafito. Otras formas con poca cristalinidad son carbón vegetal, coque y negro de humo. El carbono químicamente puro se prepara por descomposición térmica del azúcar (sacarosa) en ausencia de aire.

Las propiedades físicas y químicas del carbono dependen de la estructura cristalina del elemento. La densidad fluctúa entre 2.25 g/cm³ (1.30 onzas/in³) para el grafito y 3.51 g/cm³ (2.03 onzas/in³) para el diamante. El punto de fusión del grafito es de 3500ºC  y el de ebullición extrapolado es de 4830ºC.

El carbono elemental es una sustancia inerte, insoluble en agua, ácidos y bases diluidos, así como disolventes orgánicos. A temperaturas elevadas se combina con el oxígeno para formar monóxido o dióxido de carbono.  Con agentes oxidantes calientes, como ácido nítrico y nitrato de potasio, se obtiene ácido melítico C₆(CO₂H)₆. De los halógenos sólo el flúor reacciona con el carbono elemental. Un gran número de metales se combinan con el elemento a temperaturas elevadas para formar carburos.

El carbón vegetal, una forma amorfa del carbono, se utiliza como absorbente de gases y agente decolorante. El dióxido de carbono se utiliza en la carbonatación de bebidas, en extintores de fuego y, en estado sólido, como enfriador (hielo seco).  El monóxido de carbono se utiliza como agente reductor en muchos procesos metalúrgicos. El tetracloruro de carbono y el disulfuro de carbono son disolventes industriales importantes. El freón se utiliza en aparatos de refrigeración. El grafito, se utiliza para crisoles de alta temperatura, electrodos de celda seca y de arco de luz, como puntillas de lápiz y como lubricante.

3.2  Oxígeno

Elemento químico gaseoso, símbolo O, número atómico 8 y peso atómico 15.9994. Es de gran interés por ser el elemento esencial en los procesos de respiración de la mayor parte de las células vivas y en los procesos de combustión. Es el elemento más abundante en la corteza terrestre. Cerca de una quinta parte (en volumen) del aire es oxígeno.

En condiciones normales el oxígeno es un gas incoloro, inodoro e insípido; se condensa en un líquido azul claro. Casi todos los elementos químicos, menos los gases inertes, forman compuestos con el oxígeno. Entre los compuestos binarios más abundantes de oxígeno están el agua, H₂O, y la sílica, SiO₂; componente principal de la arena. De los compuestos que contienen más de dos elementos, los más  abundantes son los silicatos, que constituyen la mayor parte de las  rocas y suelos. Otros compuestos que abundan en la naturaleza son el carbonato de calcio (caliza y mármol), sulfato de calcio (yeso), óxido de aluminio (bauxita) y varios óxidos de hierro, que se utilizan como fuente del metal.

3.3  Hidrógeno

Primer elemento de la tabla periódica. En condiciones normales es un gas incoloro, inodoro e insípido,  compuesto de moléculas diatómicas, H₂. El átomo de   hidrógeno, símbolo H, consta de un núcleo de unidad de  carga positiva y un solo electrón. Tiene número atómico 1 y peso atómico de 1.00797. El hidrógeno común tiene un peso molecular de 2.01594. El gas tiene una densidad  de 0.071 g/l a 0ºC y 1 atm. Su densidad relativa, comparada con  la del aire, es de 0.0695.

El Hidrógeno es uno de los constituyentes principales del agua y de toda la materia orgánica, y está distribuido de manera amplia no sólo  en  la Tierra sino en todo el universo. Es la sustancia más inflamable de todas las que se conocen. El hidrógeno es un poco más soluble en disolventes orgánicos que en el agua. Muchos metales absorben hidrógeno. Se consumen grandes cantidades de hidrógeno en la hidrogenación catalítica de aceites vegetales líquidos insaturados para obtener grasas sólidas. La hidrogenación se utiliza en la manufactura de productos químicos orgánicos.

3.4  Método del Oxido Cúprico

Consiste en la reducción del oxido Cúprico o Cuproso y cobre metálico, la transformación del carbono en anhídrido carbónico y el hidrógeno en agua.  El CO₂ es recibido en la solución de Hidróxido de calcio Ca(OH)₂ o Hidróxido de Bario Ba(OH)₂con la cuales reacciona dando precipitados de Carbonato de Calcio o Carbonato de Bario ambos de color blanco (Ver Fig. 1).

El enturbamiento de la solución se debe ala formación del Carbonato de Calcio, CaCO₃de color blanco. El agua que se forma se condensa en las paredes del tubo de ensayo.  En exceso de muestra, el oxido cuproso formado puede continuar su acción oxidante hasta reducirse a Cobre metálico. 

 3.4.1  Reacciones:

Muestra (glucosa) + CuO   Æ                   CO₂  ↑ +  Cu₂O + H₂O ↓

Muestra  + Cu₂O  Æ                       CO₂ ↓  + H20 ↓  + Cuº

CO₂ + Ca(OH)₂  Æ                          CaCO₃ ↓  + H₂O

CO₂ + Ba(OH)₂  Æ              BaCO₃ ↓  + H₂O

H₂ + O₂ Æ                             H₂O

4.     TÉCNICA OPERATORIA:

v  Mezcle 0.1g de glucosa con 1.0g de Óxido de Cobre II. En un tubo de ensayo.

v  Arme un sistema de desprendimiento de gas (Ver Fig. 1):

v  Coloque en un matraz erlenmeyer o tubo de ensayo una solución saturada de hidróxido de calcio o de  hidróxido de bario.

v  Conecte al tubo de ensayo una manguera que comunique con la solución saturada de hidróxido de calcio o de bario.

v   Caliente el extremo del tubo de ensayo.

v  Observe la condensación del agua en las paredes del tubo de reacción y la aparición de turbidez o precipitación blanquesina del carbonato del metal (calcio o bario) por la producción de CO₂.

5.   REALIMENTACIÓN

·         Diferencie un compuesto orgánico de un compuesto inorgánico.

·         Haga las reacciones para la determinación de C, H y O.

·         Qué otras pruebas se pueden hacer para determinar estos elementos.

6.   BIBLIOGRAFÍA

DOMÍNGUEZ, X.1980. Experimentos de Química Orgánica. Limusa. México. 203p.